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F9에서 기능 검증까지: 혈우병 B 치료제 개발을 위한 B6-hF9 인간화 마우스 모델

Cyagen Technical Content Team | December 30, 2025
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콘텐츠
01 혈액 응고 과정에서 Factor IX의 핵심적인 역할 02 혈우병 B: 유전적 변이에서 임상 증상까지 03 대증 치료에서 잠재적 완치로 하는 혈우병 치료 패러다임의 전환 04 차세대 전임상 연구 모델 소개 05 Translational 격차 해소: 인간화 모델의 필수성 06 응고 지표 분석: 연구 모델 신뢰성의 핵심 지표 07 결론

혈우병 B(Hemophilia B)는 희귀 출혈성 질환으로, 오랫동안 치료와 연구 측면에서 중대한 도전 과제를 제시해 왔습니다. 기존 치료법은 출혈 증상 완화에는 중요한 역할을 해왔으나, 근본적인 치료법이 아니며 환자에게 상당한 경제적 부담을 안겨주고 있습니다. 이러한 한계를 극복하기 위한 노력 속에서 유전자 치료와 차세대 항체 치료가 새로운 치료 패러다임을 주도하고 있습니다. 그러나 이러한 혁신적 치료법에는 인간 질환의 병태생리와 치료 반응을 정확히 반영할 수 있는 차세대 전임상 연구 모델이 필요합니다.

혈액 응고 과정에서 Factor IX의 핵심적인 역할

혈액 응고 연쇄반응(Coagulation cascade)은 과도한 출혈을 방지하기 위한 정교한 단백질 상호작용 시스템입니다. 이 과정의 중심에는 Factor IX (F9) 가 내인성 응고 경로(Intrinsic coagulation pathway)의 핵심 조절인자로 작용합니다. F9는 비타민 K-dependent 당단백질로 간에서 합성되며, 혈장 내에서는 비활성 효소원(zymogen) 형태로 존재합니다. F9의 활성화는 혈액 응고 연쇄 반응에서 핵심적인 역할을 하며, Factor XIa(FXIa) 또는 FVIIa 조직 인자 복합체(FVIIa–TF complex)에 의해 유도됩니다.

이 과정에서 F9를 활성 형태인 FIXa로 전환시키며, FIXa는 세린 프로테아제(Serine protease)로서 응고 연쇄 반응에서 핵심적인 역할을 수행합니다. 활성화된 FIXa는 칼슘 이온과 인지질 막이 존재하는 상태에서 Factor VIIIa와 결합하여 “테나제 복합체(tenase complex)”를 형성합니다. 이 복합체는 Factor X를 Factor Xa로 전환하는 고효율 촉매 역할을 하며, 이는 차례로 트롬빈(thrombin) 생성과 안정적인 피브린 혈전(fibrin clot) 형성을 촉진합니다.

F9 단백질의 기능은 세 가지 핵심 구조 도메인에 의해 결정됩니다.

  • Gla 도메인: 비타민 K–mediated 카복실화(carboxylation)를 통해 칼슘과 인지질 막에 결합하여 응고 반응을 손상 부위에 국소화합니다.
  • EGF 도메인: Factor VIIIa와의 상호작용을 유지합니다.
  • 촉매 도메인(Catalytic domain): Factor X 절단을 직접 수행하여 응고 연쇄 반응을 시작합니다.

이러한 도메인 간의 상호작용은 종 특이성(species-specific)이기 때문에, 전임상 연구 모델은 반드시 인간 생물학을 정확히 반영해야 합니다.

F9 단백질의 구조 및 활성화 경로

그림1. F9 단백질의 구조 및 활성화 경로 [2]

혈우병 B: 유전적 변이에서 임상 증상까지

혈우병 B(Christmas disease)는 F9 유전자 변이로 인해 발생하는 희귀 출혈 질환입니다. 이 유전적 결함은 Factor IX의 결핍 또는 기능 이상을 초래하여 정상적인 혈액 응고 연쇄 반응을 방해하고 심각한 출혈 경향을 유발합니다. 이 질환은 X-연관 열성 유전 형태로 유전되며, 주로 남성에게서 발병합니다. 발생 빈도는 남아 출생 약 25,000~30,000명당 1명으로, 전체 혈우병 환자의 약 15~20% 를 차지합니다.[3]

혈우병 B 환자는 쉽게 멍드는 증상부터 외상 후 자발적·비정상적 출혈에 이르기까지 다양한 임상 증상을 경험합니다. 흔한 증상으로는 관절 내 출혈(Hemarthrosis), 근육 내 출혈(Hematoma), 내장 장기 출혈 등이 있습니다. 질환의 중증도는 매우 다양하며 특정 돌연변이 유형과 상관관계가 있습니다.

현재까지 3,000종 이상의 F9 유전자 변이가 보고되었으며, 각각 다른 수준의 질병 중증도를 유발할 수 있습니다.[4] 이러한 유전적 다양성은 혈우병 B의 복잡성을 보여주며, 개별 변이를 연구하고 맞춤형 치료 전략을 개발할 수 있는 유연한 전임상 플랫폼의 필요성을 강조합니다.

혈우병이 응고 기전에 미치는 영향

그림 2. 혈우병이 응고 기전에 미치는 영향 [1]

Factor IX 결핍과 혈우병 B의 기본 원리

그림 3. Factor IX 결핍과 혈우병 B의 기본 원리 [5]

대증 치료에서 잠재적 완치로 하는 혈우병 치료 패러다임의 전환

기존 혈우병 B의 표준 치료는 Factor IX 보충 요법이었으며, 재조합 Factor IX 제제를 정기적으로 정맥 투여하여 응고 인자 수준을 유지합니다.[6] 이 치료법은 출혈 조절에는 효과적이지만, 반복 투여에 따른 부담과 높은 비용, 이상 반응 위험을 동반합니다.[7]

최근 혈우병 B 치료 분야는 급격한 전환기를 맞이하고 있습니다. 최초의 FDA 승인 유전자 치료제인 Etranacogene Dezaparvovec(Hemgenix)은 질환의 기능적 완치를 목표로 하는 치료 전략의 가능성을 입증했습니다.[8]
또한 혈우병 A 치료제로 개발된 Emicizumab(Hemlibra)와 같은 항체 치료도 주목받고 있습니다.[9] Emicizuma는 활성형 Factor VIII의 기능을 모방하는 이중특이성 항체(Bispecific antibody)로, FIXa와 Factor X를 연결하여 트롬빈 생성을 촉진합니다.

이처럼 인간 단백질을 직접 타겟으로 하는 치료 전략의 확산은 전임상 연구에서 중요한 한계를 드러냅니다. 즉, 인간과 마우스 간 생물학적 차이로 인해 기존 동물 모델로는 치료 효과와 안전성을 정확히 평가하기 어렵다는 점입니다. 따라서 인간 F9 유전자를 발현하는 모델은 이제 연구에서 옵션이 아닌 필수적인 역할을 합니다.

혈우병 B의 다양한 치료 전략

그림 4. 혈우병 B의 다양한 치료 전략 [7]

차세대 전임상 연구 모델 소개

차세대 혈우병 B 치료제 개발을 가속하기 위해, Cyagen은 첨단 유전자 편집 기술을 활용하여 B6-hF9 인간화 마우스 모델(제품 번호: C001644)을 구축했습니다. 이 모델은 마우스의 내인성 F9 유전자를 인간 F9 유전자로 완전히 치환한 것이 특징입니다. 이 모델은 F9 돌연변이의 병리학적 기전을 연구하고, 인간 체계를 위해 특별히 설계된 치료적 개입의 효능을 검증하기 위한 생리학적으로 관련성 높은 플랫폼을 제공합니다.

전략적인 전임상 연구 모델로 B6-hF9 마우스는 인간 환자에서 발견되는 특정 Point mutation을 재현하는 모델과 같이 더 복잡한 모델을 구축하기 위한 이상적인 배경을 제공합니다. 모델의 주요 특징은 아래 표에 요약되어 있습니다

모델명 제품번호 유전적 편집 주요 응용 이차 응용
B6-hF9 Humanized Mouse C001644 Complete replacement of mouse F9 gene with human F9 gene Development and preclinical efficacy testing of human-specific gene and antibody therapies Foundation for creating specific point mutation models to study diverse F9 variants

원스톱 마우스 모델 검색 플랫폼: MouseAtlas

MouseAtlas는 KO부터 인간화 마우스까지 유전자 및 제품 모델명 검색만으로 원하는 모델을 쉽게 찾을 수 있는 플랫폼입니다. 생체 마우스인지 정자 상태인지, 실시간 재고 상황, 검증 데이터, 상세 설명 등을 직관적으로 확인하고 바로 주문할 수 있습니다. 당사 내부 제품 관리 시스템과 연동되어 실시간으로 업데이트되며, 현재 39,000종 이상의 모델 마우스가 등록되어 있어 연구자들에게 매우 편리한 원스톱 솔루션을 제공합니다.

>> MouseAtlas에서 관심 유전자 검색하기

Translational 격차 해소: 인간화 모델의 필수성

B6-hF9 인간화 마우스 모델은 신약 개발의 근본적 과제인 전임상 연구와 임상 연구 간의 translational 격차를 해소하기 위해 개발되었습니다. Knockout 마우스와 같은 기존 B형 혈우병 마우스 모델은 출혈 표현형을 정확히 재현할 수 있으나, 인간 단백질과 상호작용을 하도록 설계된 치료법 평가에는 한계가 있습니다. 예를 들어, 기능성 인간 F9 유전자를 전달하도록 설계된 유전자 치료법은 마우스 단백질만 발현하는 생쥐에서는 제대로 검증될 수 없습니다. 서로 다른 종 간의 단백질 구조, 접힘, post-translational 변형의 차이로 인해 잘못된 결과가 나올 수 있습니다.

B6-hF9 모델은 핵심 치료 타겟인 인간 F9 단백질이 이미 존재하는 연구 플랫폼을 제공함으로써 이러한 한계를 극복합니다. 이를 통해 연구자들은 유전자 치료법, 항체 및 기타 인간 특이적 치료제의 효능과 안전성을 직접 평가할 수 있습니다. 깨끗한 인간화 배경을 제공함으로써, 이 모델은 치료 후 관찰되는 응고 프로파일의 변화가 혼란을 주는 종 특이적 상호작용이 아닌 치료 개입 자체에 기인한 것임을 신뢰할 수 있게 합니다. 이는 전임상 연구 과정을 간소화하고 후기 임상 단계에서의 실패 위험을 크게 줄입니다.

모든 전임상 모델의 신뢰성은 검증 데이터에 달려 있습니다. B6-hF9 인간화 마우스 모델은 인간 F9 유전자 및 단백질의 성공적인 통합과 발현을 확인하고, 인간화가 동물의 기본 생리 상태를 방해하지 않음을 보장하기 위해 엄격한 테스트를 거쳤습니다.

검증의 첫 단계는 인간 F9 유전자가 성공적으로 통합되고 발현되었음을 확인하는 것이었습니다. 수컷 B6-hF9 마우스와 Wild-Type(WT) 대조군의 간 조직을 대상으로 유전자 발현 분석을 수행했습니다. 그림 5에 제시된 결과는 B6-hF9 마우스가 인간 F9 유전자를 상당한 수준으로 발현하는 반면, 마우스 F9 유전자는 존재하지 않음을 확인했습니다. 반대로 WT 마우스는 마우스 F9 유전자만 발현했습니다. 이 기초 데이터는 유전자 치환이 성공적으로 이루어졌음을 명확히 입증합니다.

7주령 수컷 B6-hF9 및 Wild-Type 마우스 간 조직 내 인간 및 마우스 F9 유전자 발현 비교

그림 5. 7주령 수컷 B6-hF9(hF9) 및 Wild-Type(WT) 마우스 간 조직 내 인간 및 마우스 F9 유전자 발현 비교 (n=3)

유전자 발현 외에도, 인간 유전자가 전사되어 기능성 단백질로 번역되고 혈류로 분비되는지 확인하는 것이 중요하다. 혈장 내 인간 인자 IX 단백질 농도를 측정하기 위해 ELISA(효소 결합 면역흡착 분석법)를 사용했습니다. 결과는 수컷 및 암컷 B6-hF9 마우스 모두에서 인간 인자 IX 단백질이 Wild-Type(WT) 마우스에서 검출된 수준보다 현저히 높은 수준으로 발현되었음을 보여주어, 단백질 형성 및 분비가 성공적으로 이루어졌음을 확인했습니다.

6주령 B6-hF9 마우스 및 Wild-Type 마우스 혈장 내 인간 인자 IX 발현 검출

그림 6. 6주령 B6-hF9 마우스(hF9) 및 Wild-Type(WT) 마우스 혈장 내 인간 인자 IX 발현 검출 (n=5)

응고 지표 분석: 연구 모델 신뢰성의 핵심 지표

응고 모델에 대한 가장 중요한 검증 시험 중 하나는 유전자 편집이 동물의 기본 응고 시스템을 방해하지 않는지 확인하는 것입니다. 기존 결함은 혼란 변수를 도입하여 새로운 치료법 시험에 대한 모델의 신뢰성을 저해할 수 있습니다. B6-hF9 마우스의 응고 프로파일은 활성화 부분 트롬보플라스틴 시간(APTT), 프로트롬빈 시간(PT), 트롬빈 시간(TT), 피브리노겐(FIB) 함량을 포함한 표준 검사 패널을 사용하여 평가되었습니다. 그림 7에 제시된 이러한 분석 결과는 B6-hF9 마우스와 Wild-Type(WT) 대조군 사이에서 이러한 주요 응고 매개변수 중 어느 것도 통계적으로 유의한 차이가 없음을 보여줍니다.

이 발견은 인간화 과정이 정확히 수행되어 정상적인 생리학적 배경을 가진 모델이 제작되었음을 입증하는 구체적인 증거를 제공하여, 연구계에 매우 중요한 의미를 지니고 있습니다. 따라서 연구자들은 연구 과정에서 관찰된 응고 지표의 변화가 모델 자체의 인공적 결과물이 아닌 치료적 개입의 직접적인 결과임을 확신할 수 있다. 이러한 신뢰성은 혼란 변수를 최소화하고 전임상 단계에서 임상 개발로의 전환을 가속하는 데 필수적입니다.

6주령 B6-hF9 마우스와 Wild-Type 마우스의 응고 지표 비교 분석

그림 7. 6주령 B6-hF9 마우스(hF9)와 Wild-Type(WT) 마우스의 응고 지표 비교 분석 (nB6-hF9=5, nWT=4)

결론

B6-hF9 인간화 마우스는 혈우병 B 전임상 연구를 위한 전임상 모델의 중요한 도약을 의미합니다. Cyagen은 정밀한 유전자 편집을 통해 인간 F9 유전자와 단백질을 발현할 뿐만 아니라 정상적인 기본 응고 프로파일을 유지하는 강력하고 신뢰할 수 있는 플랫폼을 구축했습니다. 이 모델은 현대 치료제 개발의 특정 요구 사항을 해결할 수 있는 독보적인 위치에 있으며, 유전자, 항체 및 기타 인간 특이적 치료법을 실험실에서 병상까지 연결하는 중요한 가교 역할을 제공합니다. Cyagen은 B6-hF9 인간화 마우스 모델을 통해 응고 및 혈액학 질환 연구의 새로운 가능성을 열어가고 있습니다.

제품번호 모델명 응용 분야
I001219 F8 KO Hemophilia A
C001509 F9 KO Hemophilia B
C001272 B6-hF11 Hemophilia C, Thrombotic Disorders
C001644 B6-hF9 Hemophilia B
C001508 HBB-bs&HBB-bt DKO Beta-Thalassemia
I001175 NKG-Kit*V831M Beta-Thalassemia, Immune Reconstitution
C001564 Jah2*V617F Myeloproliferative Neoplasms (MPN)

참고 문헌

  • American Society of Gene & Cell Therapy (ASGCT). (2020, April). World Hemophilia Day. American Society of Gene & Cell Therapy.https://www.asgct.org/publications/news/april-2020/world-hemophilia-day
  • Smith SB, & Gailan D. Update on the physiology and pathology of factor IX activation by factor XIa. Expert Review of Hematology,2008 1(1), 87–98. doi:10.1586/17474086.1.1.87
  • Liu G, Sun J, Li Z, Chen Z, Wu W, Wu R. F9 mutations causing deletions beyond the serine protease domain confer higher risk for inhibitor development in hemophilia B. Blood. 2023 Feb 9;141(6):677-680. doi: 10.1182/blood.2022017871. PMID: 36347023.
  • Kulkarni S, Hegde R, Hegde S, Kulkarni SS, Hanagvadi S, Das KK, Kolagi S, Gai PB, Bulagouda R. Mutation analysis and characterisation of F9 gene in haemophilia- B population of India. Blood Res. 2021 Dec 31;56(4):252-258. doi: 10.5045/br.2021.2021016. PMID: 34880139; PMCID: PMC8721457.
  • Fabregat A, Sidiropoulos K, Viteri G, Marin-Garcia P, Ping P, Stein L, D'Eustachio P, Hermjakob H. Reactome diagram viewer: data structures and strategies to boost performance. Bioinformatics (Oxford, England). 2018 Apr;34(7) 1208-1214. doi: 10.1093/bioinformatics/btx752. PubMed PMID: 29186351. PubMed Central PMCID: PMC6030826.
  • Liu G, Sun J, Li Z, Chen Z, Wu W, Wu R. F9 mutations causing deletions beyond the serine protease domain confer higher risk for inhibitor development in hemophilia B. Blood. 2023 Feb 9;141(6):677-680. doi: 10.1182/blood.2022017871. PMID: 36347023.
  • Mingozzi F, High KA. Gene Therapy for Hemophilia: Progress and Challenges. Mol Ther. 2019 Sep 4;27(9):1373-1381. doi: 10.1016/j.ymthe.2019.07.006. Epub 2019 Jul 18.
  • Pipe SW, Leebeek FWG, Recht M, Key NS, Castaman G, Miesbach W, Lattimore S, Peerlinck K, Van der Valk P, Coppens M, Kampmann P, Meijer K, O'Connell N, Pasi KJ, Hart DP, Kazmi R, Astermark J, Hermans CRJR, Klamroth R, Lemons R, Visweshwar N, von Drygalski A, Young G, Crary SE, Escobar M, Gomez E, Kruse-Jarres R, Quon DV, Symington E, Wang M, Wheeler AP, Gut R, Liu YP, Dolmetsch RE, Cooper DL, Li Y, Goldstein B, Monahan PE. Gene Therapy with Etranacogene Dezaparvovec for Hemophilia B. N Engl J Med. 2023 Feb 23;388(8):706-718
  • Alcedo Andrade PE, Mannucci PM, Kessler CM. Emicizumab: the hemophilia A game-changer. Haematologica. 2024 May 1;109(5):1334-1347. doi: 10.3324/haematol.2022.282099. PMID: 37916312; PMCID: PMC11063855.
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